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    生物制藥領域支原體檢測的主流方法

    發布時間: 2025-07-01  點擊次數: 303次

    生物制藥領域支原體檢測的主流方法

    在生物制藥領域,支原體污染可能影響產品安全性和有效性,因此檢測方法需具備高靈敏度、特異性和可靠性。目前該領域支原體檢測的主流方法如下:

     

    一、核酸擴增NAT-PCR )

    原理:通過設計針對支原體保守基因的特異性引物,利用 PCR 或實時熒光定量 PCR(qPCR)技術擴增樣本中的支原體核酸,通過熒光信號或電泳結果判斷是否存在污染。
    特點(qPCR法

    靈敏度高配合抽提方案,可檢測低至 101 CFU/mL 的支原體。

    速度快2-4 小時內可出結果,優于傳統培養法。

    特異性強:引物針對支原體序列,減少其他微生物干擾。

    適用范圍廣:可檢測細胞培養上清、發酵液、純化產物等多種樣本類型。
    應用場景:生物制藥生產過程中的中間產物,以及細胞庫、培養基的常規監控。

    二、支原體培養法(經典金標準)

    原理:將樣本接種于含血清、酵母提取物等營養成分的特殊培養基(如 Hayflick 培養基、PPLO 培養基)中,在適宜溫度(35-37℃)和氣體環境下培養,觀察是否出現典型的 “油煎蛋" 狀菌落。
    特點

    準確性高:可直接培養并鑒定活支原體,是藥典(如《中國藥典》3301 支原體檢查法)規定的參考方法。

    可進行藥敏試驗:若培養陽性,可進一步測試抗生素敏感性,指導污染處理。

    缺點:培養周期長(需 21 天以上),操作復雜,對實驗室環境和技術要求高。
    應用場景:用于法規要求的最終產品放行檢測

    三、指示細胞法

    原理:是一種通過觀察特定細胞(指示細胞)在支原體污染后的形態或功能變化,來間接檢測支原體的方法。

    特點:

    直觀性:通過細胞形態或代謝變化直接反映支原體感染,無需復雜儀器,適合基層實驗室。

    模擬生理環境:指示細胞與支原體的相互作用更接近實際感染場景,可檢測部分難以用核酸或培養法發現的苛養型支原體。

    缺點需較高濃度的支原體(10?-10? CFU/mL)才能觀察到明顯變化,易漏檢早期或低水平污染耗時較長共培養需 3-7 天特異性差結果判斷易受人為因素影響

    應用場景初步篩查在缺乏 PCR 設備的實驗室中,作為支原體污染的初篩手段,尤其是細胞培養過程中的日常監控

     

    幾種方法的對比

    檢測方法

    靈敏度

    檢測時間

    特異性

    操作復雜度

    法規符合性

    指示細胞法

    3-7 天

    非藥典主流方法

    培養法

    21 天以上

    藥典金標準

    核酸擴增法(qPCR 法)

    2-4 小時

    藥典可選:經過驗證后,可以選用

     

     

     

     


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